Q1. 細(xì)胞如何貼壁或者固定好？

這是第一步，也是基礎(chǔ)和關(guān)鍵的一步，這是基礎(chǔ)，基礎(chǔ)不好，后面一切都是白搭。

對于貼壁細(xì)胞: 先將潔凈的爬片片在 70%乙醇中進(jìn)行浸泡處理，然后用干凈無菌的鑷子放置到培養(yǎng)皿中，用無菌 PBS 洗去殘留的乙醇。待細(xì)胞接近長成單層后取出蓋玻片(一般都是過夜培養(yǎng))操作小心，防止細(xì)胞脫片。

對于懸浮細(xì)胞: 如果能像貼壁細(xì)胞一樣，那就好了。傳統(tǒng)這是一個(gè)痛點(diǎn)待解決，其實(shí)新的方法就是使用靶點(diǎn)科技（Biotarget）的懸浮細(xì)胞免疫熒光專用玻片。讓懸浮細(xì)胞簡單四步，就能像貼壁細(xì)胞一樣固定好，主要是，細(xì)胞還是活的，還可以刺激。

Q2. 如何避免多種染色互串？

*細(xì)胞不能鋪的太密，細(xì)胞稀釋一下，濃度不能太高，盡可能用大體積來鋪細(xì)胞。太密就導(dǎo)致一抗結(jié)合蛋白增多，更容易出現(xiàn)非特異性染色，且細(xì)胞太密，顯微鏡拍照出來的效果就會很一般，一般6孔板滿孔的貼壁細(xì)胞，取1/8的量鋪到帶有爬片的12孔板里，大概12小時(shí)后，細(xì)胞密度就剛剛好。懸浮細(xì)胞，直接用靶點(diǎn)科技的懸浮細(xì)胞免疫熒光專用玻片就行。雙抗體染色時(shí)可不用活細(xì)胞染核液（Hoechst），也就是不要最開始染核，放到最后封片時(shí)，用DAPI染，DAPI濃度不要過高，核很容易被染色，低濃度染色即可。

*支原體清除后再做IF。用狀態(tài)好，未被污染的細(xì)胞去做IF，狀態(tài)好的細(xì)胞伸展很開，染色效果也更好，若細(xì)胞支原體污染，可能會產(chǎn)生背景臟，圖像不完整等現(xiàn)象，非特異性染色嚴(yán)重且去不掉，染核染抗體都會被染上亂七八糟的東西。

*一抗?jié)舛鹊膯栴}。雙抗體染色若外轉(zhuǎn)質(zhì)粒，可染標(biāo)簽抗體，標(biāo)簽抗體更特異且使用濃度低，一般都在1：500左右；若染內(nèi)源性蛋白，濃度可1：200，做之前記得看下抗體說明書該抗體是否可以做IF；4度過夜染效果更好，一抗可回收，負(fù)20保存，大概可用3次，根據(jù)抗體靈敏度決定使用次數(shù)；雙抗體IF，一定要用不同來源的的抗體，一個(gè)用鼠，一個(gè)用兔，最好不要雙鼠或者雙兔的。

*二抗：常溫孵育1～2h，避光，避開同屬性的二抗，洗滌一抗可用pbs，洗滌二抗可以用tbst，多加一些吐溫。吐溫可以洗滌掉非特異結(jié)合的抗體，多洗幾次。

*拍攝：封片后拍攝時(shí)，可以適當(dāng)縮短激發(fā)光波長，使其沒有交叉波長。比較好的選擇：綠光488，紅光555。重合的波譜，就會不單純激發(fā)。拍出來就不單純。